1.觀察細胞生長狀態(tài)，取生長狀態(tài)良好的細胞去掉培養(yǎng)基，加入無血清培養(yǎng)基饑餓處理24h。

2.將基質膠置于冰中并在4℃過夜融化，將24孔細胞嵌入皿、移液管或槍頭放入4℃預冷過夜。

基質膠鋪膠準備

3.稀釋基質膠：在冰上，將基質膠用無血清培養(yǎng)基稀釋至1mg/mL，使用預冷的吸頭混合至均勻狀態(tài)。

4.均勻鋪膠：取60μL上述混合溶液垂直加入嵌入皿中，使其均勻平鋪在底部，注意均勻鋪膠，不要產生氣泡。
5.凝膠：隨后置于37℃孵育2-4h聚合成薄膜，小心吸出未結合的基質膠。

6.基底膜水化：加入100μL無血清培養(yǎng)基，將培養(yǎng)板置于37℃培養(yǎng)箱孵育30min，進行水化。

細胞鋪板

7.去除嵌入皿中液體，檢查是否有液體穿過上室進入到下室中，若沒有，則可用于接種細胞。

8.用無血清培養(yǎng)基配制樣本，建議將工作液濃度設置成終濃度的2倍。隨后按樣本：細胞懸液=1：1的比例加入到嵌入皿內。

9.取500μL含10%FBS的完全培養(yǎng)基加入24孔板下室，用鑷子將嵌入皿置于24孔板內。

10.消化饑餓后的細胞，用1mL無血清培養(yǎng)基重懸，進行細胞計數，根據上室細胞接種數量調整細胞密度。

11.先加入50μL的樣本工作液，再加入50μL的細胞懸液，此時樣本濃度被稀釋2倍即為終濃度。

12.將24孔板置于37℃，5%CO₂，90%濕度條件下培養(yǎng)24-48h。

13.取出嵌入皿，去除培養(yǎng)液，在24孔板干凈的孔中加入600uL 4%多聚甲醛固定液，將小室放入孔中室溫固定15-30分鐘，棄固定液，PBS洗滌小室內外2-3次。

14.在24孔板干凈的孔中加入600uL結晶紫染色液，將小室放入孔中室溫染色8-10分鐘，棄染色液，PBS洗滌小室內外2-3次。

15.適當風干或用棉簽擦干后，在顯微鏡下觀察。

16.用小鑷子小心揭下膜，底面朝上，適當風干后，移至載玻片上用中性樹膠封片。在高倍顯微鏡下進行觀察和拍照，隨機選取5個視野(上、下、中央、左、右各1個)計數呈紫色的細胞，統(tǒng)計結果。

注：“非貼壁”細胞計數，由于某些細胞自身的原因或某些膜的關系，有時細胞在穿過膜后不能附著在膜上，而是掉進下室。這種情況下可以收集下層培養(yǎng)液，用流式細胞儀計數細胞量，也可用細胞計數的方法直接在鏡下計數。

利用細胞嵌入皿檢測細胞的遷移和侵襲能力時，需要根據細胞特性選擇嵌入皿的孔徑，如下圖，在不同孔徑的PC膜嵌入皿中以相同密度接種HT22細胞，觀察其遷移情況：

圖：HT22細胞在不同孔徑嵌入皿的遷移情況

結論：使用孔徑為8μm的PC膜嵌入皿時，HT22細胞表現(xiàn)出較好的遷移能力，且未有明顯的細胞遺漏、細胞在孔底貼壁等現(xiàn)象

* 規(guī)格：培養(yǎng)板（6孔、12孔、24孔）

            培養(yǎng)皿（100mm）

* 類型：懸掛式、插入式

* 膜孔徑：0.1μm、0.4μm、1.0μm、3.0μm、5.0μm、8.0μm、12.0μm

* 膜材質：膜聚碳酸酯(PC)、聚對苯二甲酸乙二醇酯(PET)

* 表面處理：TC處理表面

潔特生物提供多種規(guī)格的細胞嵌入皿，以滿足不同實驗場景的需求。在選擇細胞嵌入皿時，以下幾個方面是需要考慮的關鍵因素：

潔特生物細胞嵌入皿提供24孔、12孔、6孔培養(yǎng)板以及100mm培養(yǎng)皿等四種容器規(guī)格的產品。選擇時應根據細胞數量、實驗組別設置和實驗規(guī)模等條件來決定。

潔特生物細胞嵌入皿提供兩種高品質膜材選擇，分別為PET膜與PC膜，二者均具備標準化的額定孔密度，可滿足不同實驗需求。

a) 聚對苯二甲酸乙二醇酯（PET）膜：擁有卓越的透光性能，能在顯微鏡下清晰呈現(xiàn)細胞狀態(tài)與細胞層的形成過程，是光鏡觀察、電鏡檢測以及免疫組化等實驗的不二之選。

b) 聚碳酸酯（PC）膜：細胞粘附性更強，可有效促進跨膜物質交換，尤其適用于組別較多、對細胞粘附與物質交換要求較高的實驗場景

潔特生物細胞嵌入皿提供0.1μm、0.4μm、1.0μm、3.0μm、5.0μm、8.0μm、12.0 μm等孔徑選擇，可參考下表選擇合適的孔徑。